FENOTIPO:
F = Expresión Sativa (DOMINANTE)
f = Expresión Índica (recesivo)
FOTOPERIODO:
L = Floración Larga (DOMINANTE) ← CORRECCIÓN
l = Floración Corta (recesivo)
TAMAÑO:
T = Grande (DOMINANTE)
t = Compacto (recesivo)
Proporción Genotípica: 50% S I / 50% I I. (La misma proporción que el F1).
Proporción Genómica: La composición genética general de la descendencia ahora es 75% Neville’s Hindu Kush y 25% Unknown Strain.
Impacto Fenotípico:
Estabilidad: Al incrementar la contribución genética de la Hindu Kush (estabilizada y homocigota), se reduce la variabilidad en la descendencia. Las plantas serán más uniformes.
Expresión del Rasgo: Las características de la Hindu Kush (efecto corporal sedante, resinosidad, aromas terrosos y dulces, estructura compacta) se vuelven mucho más dominantes y consistentes.
Perfil de la OG Kush: Se mantiene la «esencia» OG del genotipo S I, pero atenuada y enmarcada dentro de un perfil más índico y pesado. La complejidad de combustibles y cítricos se mezcla con más fuerza sobre una base terrosa y afgana.
Resumen Final del Análisis
OG Kush (F1): Es el cruce inicial 50/50 entre la genética química/compleja de la «Unknown Strain» y la índica pura y estabilizada de Neville’s Hindu Kush. Es un híbrido inestable donde se buscan fenotipos específicos (S I).
Super OG Kush (Retrocruce): No es un simple F1. Es el resultado de llevar la OG Kush un paso hacia atrás, reforzando su herencia de la Neville’s Hindu Kush. Esto da como resultado:
Un híbrido con 75% de genética Hindu Kush.
Mayor estabilidad, predictibilidad y dominancia índica.
Un perfil que es más «Kush» y menos «OG» que la original, con un efecto más corporal y sedante, pero conservando la potencia y los matices distintivos de la línea OG.
En esencia, la Super OG Kush de Pyramid Seeds es una versión potente y estabilizada de la OG Kush que prioriza y amplifica las características de la legendaria Hindu Kush de Neville.
En este manual encontrarás toda la información necesaria para manejar los fundamentos básicos del Breeding.
Seeds Chile: Preservación genética, asesoría en crianza y producción de semillas regulares, feminizadas y autoflorecientes.
Objetivos:Que los participantes aprendan a combinar, introducir y seleccionar genes en la obtención de líneas mejoradas.
Antes de adentrarnos en el fascinante mundo del Breeding comenzaremos por ver este video.
¿Qué es y cómo se crea una semilla de Cannabis?
Repasemos algunos conceptos y procesos que se deben manejar para poder comprender y aplicar en el arte del Breeding.
El Gen: A nivel genético, el gen es la unidad básica de la herencia de los seres vivos y es la unidad mínima de función genética, que puede heredarse.
Cromosomas: La planta de cannabis es un organismo diploide, lo que significa que tiene dos conjuntos de cromosomas en sus células somáticas (no reproductivas).
El número de cromosomas en el cannabis es: 2n = 20 (donde «n» es el número de cromosomas en un solo conjunto). Esto significa que: En las células somáticas, como las de las hojas, tallos y raíces, hay 20 cromosomas (10 pares de cromosomas homólogos).
Genes Alelos: Los genes alelos, son versiones diferentes de un mismo gen que ocupan el mismo locus (posición) en cromosomas homólogos. Estos genes determinan variaciones en cada característica específica de la planta: cannabinoides, terpenos, fotoperíodo, estructura, resina, etc.
Los alelos son claves en la diversidad genética del cannabis, permitiendo la gran variedad de efectos, sabores y características que conocemos hoy.
Homocigoto: Esto significa que ambos alelos que definen cada característica, uno heredado de cada parental, son idénticos.
Heterocigoto: Esto significa que los alelos que definen cada característica heredados de cada parental son diferentes.
Locus: Cada gen ocupa una posición definida llamada locus.
Mitosis: La mitosis es un proceso fundamental para la vida. Durante la mitosis, una célula duplica todo su contenido, incluyendo sus cromosomas, y se divide para formar dos células hijas idénticas. En resumen, la mitosis en las plantas es un proceso esencial para su crecimiento, desarrollo y reproducción, adaptado a las características únicas de las células vegetales.
Meiosis: En las células reproductivas (gametos), como los granos de polen y los óvulos, el número de cromosomas se reduce a la mitad debido a la meiosis, resultando en 10 cromosomas (haploide, n = 10).
Mitosis y Meiosis: Todos los organismos que se reproducen sexualmente, realizan este proceso de división celular.
Genotipo: El genotipo es el conjunto de genes que cada individuo ha heredado. Este genotipo es esencialmente fijo, permanece constante a lo largo de toda la vida de un individuo y es inmodificable por efectos ambientales. Dependiendo del medio ambiente, un genotipo puede producir varios fenotipos diferentes o también varios genotipos pueden producir un solo fenotipo.
Fenotipo: El fenotipo es la manifestación visible del genotipo en un determinado ambiente, por lo tanto, está determinado fundamentalmente por el genotipo o por la identidad de los alelos, los cuales, individualmente, cargan una o más posiciones en los cromosomas. En este sentido, la interacción entre el genotipo y el fenotipo ha sido descrita usando la siguiente ecuación: Fenotipo = Genotipo + Ambiente
Las plantas se dividen en dos familias principales: Autógamas y Alógamas
Plantas Autógamas: Se consideran plantas autógamas a aquellas que utilizan la autofecundación como mecanismo reproductivo. Ejemplos: soja, frijol, arveja, tomate, tabaco, arroz, trigo, cebada, avena.
Plantas Alógamas: Se considera como alógamas a aquellas plantas que no se autofecundan, sino que, por el contrario, poseen mecanismos de fecundación cruzada. Según el tipo de flor que posean, las plantas alógamas se clasifican en tres grupos: Hermafroditas; Monoicas; Dioicas.
La planta del Cannabis es una planta Alógama Dioica.
Variedades del Cannabis
Característica
Cannabis sativa
Cannabis indica
Cannabis ruderalis
Origen geográfico
Zonas ecuatoriales (Asia, América, África)
Regiones montañosas (Hindu Kush, Afganistán)
Europa del Este, Rusia, Asia Central
Tamaño de la planta
Alta (2-4 metros o más)
Baja y arbustiva (0.5-2 metros)
Muy pequeña (0.3-1 metro)
Estructura foliar
Hojas delgadas y largas (7-9 folíolos)
Hojas anchas y cortas (5-7 folíolos)
Hojas pequeñas y gruesas (3-5 folíolos)
Ciclo de vida
Largo (3-6 meses, fotoperiódica)
Medio (2-4 meses, fotoperiódica)
Corto (autofloreciente, 8-10 semanas)
Producción de THC
Alto (15-25% o más)
Moderado a alto (12-20%)
Muy bajo (<3%)
Producción de CBD
Bajo a moderado
Moderado a alto
Variable (puede ser alto en híbridos)
Efectos psicoactivos
Energizante, cerebral, creativo
Sedante, relajante corporal
Leve o casi nulo
Resistencia
Sensible a climas fríos
Resistente a plagas y climas fríos
Muy resistente (climas duros, autoflorece)
Uso principal
Recreativo (euforia) y terapéutico
Medicinal (analgésico, relajante)
Cruces para autoflorecientes o fibra
Tabla uso Cannabinoides
Cannabinoide
Psicoactivo
Receptores SEC
Efectos Principales
Usos Potenciales
Abundancia
THC (Δ9 Tetrahidrocannabinol)
Sí (euforia, «high»)
CB1 (fuerte), CB2
Euforia, relajación, aumento del apetito, alivio del dolor
Supresor del apetito, energizante, regulador glucémico
Diabetes, obesidad, Parkinson
Baja (<1%)
CBDV (Cannabidivarina)
No
TRPV1, CB1/CB2 (modulador)
Anticonvulsivo, antiinflamatorio
Epilepsia, trastornos neurológicos
Baja (trazas)
Δ8-THC
Sí (menos que Δ9-THC)
CB1/CB2 (similar a Δ9-THC, pero más suave)
Relajación, alivio del dolor, menos ansiedad
Náuseas, dolor, ansiedad (alternativa suave al THC)
Muy baja (sintetizado o en trazas)
CBN (Cannabinol)
Leve (solo en altas dosis)
CB1/CB2 (débil), preferencia por CB2
Sedante, antibacteriano, antiinflamatorio
Insomnio, dolor, infecciones bacterianas
Baja (producto de degradación del THC)
Conclusión: Cada cannabinoide tiene un perfil único, y su efecto depende de la interacción con otros compuestos de la planta (efecto «entourage»). Mientras el THC es el principal psicoactivo, cannabinoides como CBD, CBG o CBN ofrecen beneficios terapéuticos sin intoxicación.
Leyenda y notas importantes:
SEC: Sistema Endocannabinoide (CB1 = cerebro/sistema nervioso; CB2 = sistema inmunológico).
THCV puede actuar como antagonista del THC en dosis bajas (reduce el «high»), pero en dosis altas es psicoactivo.
Δ8-THC es un isómero del THC con efectos similares pero menos potentes.
CBN se forma cuando el THC se oxida (envejecimiento o exposición al calor/aire).
CBDV y THCV son más comunes en variedades de cannabis tailandesas y africanas (como las cepas Landrace).
Tabla de Terpenos del Cannabis: Usos, Aromas y Efectos
Tabla Comparativa: Terpenos y su Asociación con Genéticas de Cannabis
Notas Clave:Híbridos : Combinan terpenos como cariofileno o terpinoleno para efectos balanceados. Indica : Dominada por mirceno y linalool (efectos sedantes). Sativa : Suele tener limoneno, pineno o humuleno (efectos energéticos o eufóricos). Mirceno: El terpeno más común en cannabis índica (hasta 60% del perfil en Afghan Kush). Cariofileno : Unico terpeno que actúa directamente sobre el sistema endocannabinoide (receptor CB2).
Para manejar el arte del Breeding debemos comprender que la constitución genotípica de cada planta depende de cierta manera de la forma en que ésta se reproduce, por lo tanto, el sistema reproductivo de cada planta estará relacionado con el método específico que debe utilizarse para poder mejorarla y de como el medio influye en ella.
Los fenomenos principales que se manifiestan en la crianza del cannabis son: dominancia (completa, incompleta, codominancia), epistasia, Herencia Poligénica y Plasticidad Fenotípica.
Genética Mendeliana: Dominancia Completa.
Mendel fue un monje Austriaco, naturalista y aficionado al Breeding.
Mendel sentó las bases del fitomejoramiento convencional y se le considera hasta el día de hoy el padre de la genética.
Mendel: Inició sus experimentos con plantas puras de arveja, en las cuales identificó siete características distintas y contrastantes, y notó que al cruzarlas entre sí, solo se manifestó una de las dos características, a las características que se manifestaron en el primer cruce filial F1 les llamo dominantes y a las que no recesivas.
Primera ley de Mendel:
Principio de la uniformidad de los heterocigotos de la primera generación filial (F1)
Cruce MonoHíbrido: análisis de un solo carácter
En el cruce F1 solo se manifiesta el carácter dominante.
Segunda Ley de Mendel:
Principio de la segregación de los caracteres en la segunda generación filial F2.
Cruce MonoHíbrido: análisis de un solo carácter
En la F2 se produce la segregación de tres partes para el carácter dominante y de una parte para el carácter recesivo.
Tercera Ley de Mendel:
Principio de la Transmisión Independiente de los caracteres hereditarios en la segregación de la autopolinización de un híbrido F2.
Análisis de dos caracteres: (Cruce Dihíbrido)
La tercera ley nos dice que, al estudiar dos características contrastantes, pero en estado heterocigoto de un cruce F2, se produce una combinación de alelos en ambos caracteres, y estos en la descendencia se manifiestan en una proporción de 9:3:3:1
El éxito del trabajo de Mendel se debe a:Acierto al escoger la especie. Aplicación del método científico. Observación de los caracteres contrastantes. Diseño cuidadoso de los experimentos. Utilización del análisis estadístico “para llegar a la brillante idea de que los caracteres están determinados por pares de genes”
LaImportancia de las leyes de Mendel:Base de la genética clásica; Mendel sentó las bases para entender cómo se heredan los caracteres.Concepto de genes y alelos; Introdujo la idea de que los organismos tienen pares de factores (ahora llamados genes) que controlan los caracteres. Predicción de patrones hereditarios, permite predecir cómo se transmitirán los caracteres a la descendencia.
Limitaciones de las leyes de Mendel: No explican explican los fenomenos de transmisión de la herencia no Mendelianos. A pesar de estas limitaciones, las leyes de Mendel, siguen siendo fundamentales en el estudio de la genética y la biología.
Dominancia: Completa, Incompleta y Codominancia
Dominancia Completa
«Si cruzas la variedad Oaxaca (hojas verdes) con Hindú Kush (hojas moradas), el verde es dominante sobre morado, toda su descendencia tendrá hojas verdes. El morado no se ve, pero sigue oculto en sus genes.»
Tabla: Dominancia Completa en Cannabis
Variable
Descripción
Ejemplo en Cannabis
Definición
Un alelo domina completamente al otro, enmascarando su expresión en heterocigosis.
Alelo V (verde) domina sobre m (morado).
Expresión Fenotípica
Solo se observa el fenotipo del alelo dominante en heterocigotos.
Plantas Vm son verdes (no muestran morado).
Parentales
Cruce entre homocigotos dominante y recesivo.
Oaxaca (VV) × Hindu Kush (mm).
Generación F1
Todos los hijos muestran el fenotipo dominante.
100% Vm (verdes, aunque portan el alelo morado).
Generación F2
Proporción 3:1 (dominante:recesivo).
75% verdes (VV + Vm), 25% morados (mm).
Implicación Práctica
El alelo recesivo puede «esconderse» por generaciones.
Si cruzas plantas verdes F1 (Vm), el 25% de F2 será morado.
Aplicación en Breeding
Estabilizar fenotipos dominantes o rescatar recesivos.
Para líneas 100% verdes: seleccionar VV. Para morados: buscar mm en F2.
Puntos clave:
Herencia Mendeliana Clásica: La dominancia completa sigue el modelo de Mendel (ej.: proporción 3:1 en F2).
Ventaja en cultivo: Facilita la estabilización de rasgos deseables (como potencia o color) en pocas generaciones.
Limitación: Los rasgos recesivos (ej.: CBD) pueden «esconderse» en heterocigotos, requiriendo pruebas genéticas o cruces de retrocesión para identificarlos.
Dominancia Incompleta
Si cruzas la variedad Oaxaca (hojas verdes) con la Hindú Kush (hojas moradas), sus híbridos no se parecen a ninguno de los dos padres, sino que muestran un color intermedio.
Tabla: Dominancia Incompleta en Cannabis
Variable
Descripción
Ejemplo en Cannabis
Definición
Ningún alelo domina completamente, resultando en un fenotipo intermedio.
Alelo V (verde) y m (morado) se mezclan en heterocigotos.
Expresión Fenotípica
Los heterocigotos muestran un fenotipo mezcla de ambos parentales.
Permite crear fenotipos únicos no presentes en los parentales.
El color azul (intermedio) es exclusivo de la F1/F2.
Aplicación en Breeding
Ideal para desarrollar nuevos rasgos visuales o químicos intermedios.
Cruces para obtener tonalidades únicas (ej. azules en flores).
Puntos Claves:
El fenotipo intermedio es clave para identificar dominancia incompleta.
En F2, el 50% de las plantas mostrarán el rasgo intermedio.
Útil para mejoramiento estético o rasgos cuantitativos (ej. niveles de THC/CBD intermedios).
Co-Dominancia
Al cruzar Mexico Oaxaca con Hindú Kush, sus híbridos F1 no muestran un color intermedio (como en dominancia incompleta), sino ambos colores simultáneos en la misma planta.
Tabla Comparativa: Codominancia en Cannabis
Variable
Descripción
Ejemplo en Cannabis
Definición
Ambos alelos se expresan sin mezclarse, mostrando ambos fenotipos en paralelo.
Alelo V (verde) y m (morado) senvillano.
Expresión Fenotípica
Los heterocigotos exhiben ambos rasgos parentales de forma diferenciada.
Hojas con manchas/rayas verdes Y moradas (no mezcladas).
Parentales
Cruce entre homocigotos con fenotipos puros.
Oaxaca (VV verde) – Hindu Kush (mm morado).
Generación F1
100% de la descendencia ambos muestra fenotipos.
Vm = (hojas bicolores).
Generación F2
1:2:1 (como en dominancia incompleta, pero con expresión dual).
25% verde (VV), 50% de bicolor (Vm), 25% morado (mm).
Implicación Práctica
Permiso de la experiencia portadora de ambos rasgos sin ambigaedad.
El fenotipo bicolor revela la presencia de ambos alelos.
Aplicación en Crianza
Ideal para seleccionar resultados duales (ej. cannabinoides o colores contrastantes).
Crear plantas con THC – CBD visibles en diferentes zonas.
Puntos Claves:
Expresión Simultánea de Ambos Alelos: Los heterocigotos manifiestan los dos alelos sin mezclarse ni diluirse.
Proporciones Mendelianas Claras: En la F2, la descendencia sigue una proporción 1:2:1
Aplicación en Mejoramiento Genético : Permite seleccionar rasgos duales (ej. cannabinoides o colores contrastantes) de forma visual y predecible.
Cruce para el estudio de epistasia
La epistasia ocurre cuando un gen enmascara o modifica la expresión de otro gen distinto. Para estudiarla en cannabis, se diseñan cruces controlados que revelen interacciones génicas en rasgos como:
Resistencia al estrés (sequía, plagas).
Producción de cannabinoides (ej: THC vs. CBD).
Perfiles de terpenos.
Existen varios tipos de interacciones epistáticas, dependiendo de cómo los genes interactúan.
Tabla Comparativa: Tipos de Epistasis en Cannabis
En el cannabis (Cannabis sativa), se pueden observar varios tipos de epistasis que modifican la expresión de rasgos como cannabinoides (THC, CBD) y terpenos. Estos son los principales mecanismos epistáticos documentados y sus efectos específicos:
Tipo de Epistasis
Proporción Fenotípica (F2)
Mecanismo Genético
Ejemplo en Cannabis
Implicaciones en Cruces
Epistasis Recesiva
9:3:4
Un gen recesivo (aa) enmascara la expresión de otro gen (B/b).
Gen A: Si aa, cogollos son blancos (sin importar B/b). Gen B: Define púrpura (B-) o verde (bb).
Cruces con aa ocultan rasgos deseables (ej: color). Requiere homocigotos dominantes (AA) para expresar B/b.
Epistasis Dominante
12:3:1
Un alelo dominante (A-) suprime la expresión de B/b.
Gen A: Bloquea producción de THC (A- = sin THC). Gen B: Sin A, define THC alto (B-) o bajo (bb).
Plantas aaB- son las únicas con THC alto. A- descarta plantas psicoactivas.
Doble Recesiva (Complementaria)
9:7
Dos genes (A y B) deben estar en forma dominante (A-B-) para expresar el rasgo.
Selección artificial: Los breeders enfatizan ciertas epistasis (ej: suprimir CBD para THC alto).
Aplicaciones en Breeding
Desarrollar variedades con cannabinoides estables: Evitar que genes supresores reduzcan el THC o CBD.
Mejorar perfiles de terpenos: Combinar genes que potencien terpenos especificos.
Conclusión:
En cannabis, la epistasis recesiva y dominante son las más relevantes para cannabinoides, mientras que la doble recesiva y supresión afectan terpenos y morfología. Entender estos patrones permite:
Innovar en quimiotipos (ej: THC+CBD+terpenos específicos).
Herencia Poligenica: Cruzamiento poli-hibrido
Un polihíbrido es una variedad de cannabis creada mediante el cruce de múltiples híbridos (generalmente F1 o F2) que ya contienen mezclas genéticas complejas. A diferencia de los híbridos simples (2 parentales) o dobles (4 parentales), los polihíbridos integran contribuciones genéticas de numerosas líneas, lo que resulta en una diversidad fenotípica extrema y combinaciones únicas de cannabinoides, terpenos y rasgos agronómicos
Características Clave de un Polihíbrido
Aspecto
Descripción
Parentales
≥3 híbridos previos (ej: cruzar un híbrido F1 de A×B con otro F1 de C×D×E).
Genética
Alta heterocigosidad y recombinación génica.
Expresión fenotípica
Variabilidad extrema (ej: plantas con THC 15-25% en la misma generación).
Estabilidad
Baja; requiere selección masiva para fijar rasgos.
Vigor híbrido
Puede ser alto inicialmente, pero disminuye en generaciones avanzadas.
Proceso de CreaciónEjemplo Práctico
Selección de híbridos base: Cruza un F1 (OG Kush × Haze) con otro F1 (Gelato × Durban Poison).
Generación polihíbrida: Los descendientes (F1 polihíbridos) muestran combinaciones impredecibles de los 4+ parentales originales.
Selección fenotípica: Identificar y aislar individuos con rasgos deseables.
Ventajas vs. Riesgos
Ventajas
Riesgos
– Diversidad química sin precedentes.
– Inestabilidad genética.
– Potencial para fenotipos únicos.
– Requiere miles de plantas para selección.
– Adaptabilidad a múltiples ambientes.
– Depresión endogámica en generaciones avanzadas.
Aplicaciones en el Breeding:
Los polihíbridos son la vanguardia del breeding experimental en cannabis, ideales para:
Exploración de nuevos perfiles: Crear combinaciones innovadoras de terpenos (ej: mango + pino + chocolate).
Mejora de rasgos complejos: Optimizar THC + CBD + rendimiento en una sola variedad.
Desarrollo de «cultivares boutique»: Variedades limitadas con características exóticas para mercados especializados.
Proyectos a largo plazo con recursos para selección masiva.
La herencia poligénica hace que la crianza de cannabis sea un complejo proceso pero manejable con técnicas modernas. La combinación de métodos tradicionales (selección fenotípica) con herramientas genómicas acelera el desarrollo de variedades superiores.
Plasticidad fenotípica
La plasticidad fenotípica es la capacidad de un mismo genotipo de expresar diferentes fenotipos (características físicas y bioquímicas) en respuesta a cambios en el ambiente ambiente. En el cannabis, esto significa que una variedad genética puede desarrollar de forma diferente según factores como: Luz (intensidad, espectro, fotoperiodo). Nutrientes (tipo y cantidad de fertilizantes). Estrés (sequía, temperatura, humedad, poda). Sustrato (suelo, hidroponía, coco).
Manifestaciones de la plasticidad fenotípica en el cannabis
Cambios morfológicos
Crecimiento vegetativo vs. reproductivo: Más horas de luz (18/6) – Mayor crecimiento en altura y hojas. Menos horas de luz (12/12) Induce la floración y formación de cogollos.
Estructura de la planta: Alta intensidad lumínica – Tallos más gruesos, entrenudos más cortos. Poda apical ramificación lateral.
Producción de cannabinoides y terpenos
THC/CBD: Estrés lumínico (UV-B) – Aumento en cannabinoides. Exceso de nitrógeno . Reducción en producción de resina.
Perfil de terpenos: Estrés hídrico moderado más terpenos (ej.: mirceno, limoneno). Temperaturas frescas en floración alta expresión de terpenos complejos.
Respuesta al estrés ambiental
Resistencia a plagas y hongos: Plantas en exterior desarrollan alta resistencia que en interior (por exposición natural a patógenos).
Tolerancia a-equeña o exceso de agua: Las raíces se adaptan al sustrato (más largas en suelo seco, más finas en hidroponía).
Tiempo de floración y maduración
En climas fríos – Las plantas puede acelerar la floración para reproducirse antes.
Implicaciones en la crianza del cannabis
Desafíos
Fenotipos engañosos : Una planta puede parecer «superior» por condiciones ambientales favorables, pero no por genética.
Dificultad para estabilizar rasgos: Si un cultivar se comporta bien en un ambiente pero mal en otro, su selección es complicada.
Interacción genotipo-ambiente (G-E): Un cruce puede dar resultados diferentes en interior vs. exterior.
Estrategias para manejar la plasticidad
Pruebas multiambientales: Evaluar las propias acciones en distintos ambientes (ej.:, exterior, hidroponía).
Selección bajo estrés controlado: Exponer plantas a estrés moderado (ej.: luz UV, déficit hídrico) para identificar genotipos resilientes.
Fenotipado de precisión: Medir rasgos de forma objetiva y minimizar el sesgo ambiental.
Estabilizar genéticas «robustas» Priorizar plantas que mantienen rasgos deseables en distintos entornos (ej.: estable producción de THC).
Futuro de la investigación en plasticidad y cannabis
Estudios epigenéticos: Cómo factores ambientales activan/desactivan genes sin cambiar el ADN.
Modelos predictivos: Uso de big data e IA pueden predecir fenotipos según ambiente y genética.
Crianza para plasticidad controladora: Desarrollar variedades que aprovechen plasticidad (ej.: aumento resina bajo estrés lumínico).
La plasticidad fenotípica es un arma de doble filo en la crianza del cannabis:
Ventaja : Permite cultivar en diferentes entornos sin modificar genética.
Desafío : Exige protocolos rigurosos para seleccionar los mejores genotipos.
Clave: Combinar selección genética con manejo ambiental para obtener cultivos consistentes y de alta calidad.
Cruce Recíproco: Impronta Genetica y Herencia ligada al sexo
¿Qué es un Cruce Recíproco? En el cannabis, los cruces recíprocos son una herramienta clave para identificar si ciertos rasgos (ej: producción de resina, ratio THC/CBD, resistencia a plagas) están influenciados por genes ligados al sexo o al citoplasma (herencia materna).
Consiste en realizar dos cruces paralelos intercambiando los parentales masculinos y femeninos. Si los resultados difieren entre ambos cruces, sugiere que los rasgos estudiados tienen: Efectos citoplasmáticos (ADN de cloroplastos o mitocondrias, que solo se heredan de la madre). Herencia ligada al sexo (genes en cromosomas sexuales).
Protocolo: Seleccionar parentales contrastantes.
Ejemplo:
♀ Planta A (alta producción de resina).
♂ Planta B (baja producción de resina).
Realizar ambos cruces:
Cruce 1: ♀A × ♂B
Cruce 2: ♀B × ♂A
Evaluar la descendencia (F1):
Comparar:
Niveles de cannabinoides y terpenos.
Morfología (ej: densidad de tricomas).
Resistencia a estrés.
Análisis estadístico:
Si ♀A × ♂B ≠ ♀B × ♂A → Posible herencia ligada al sexo o citoplasmática.
Si ♀A × ♂B = ♀B × ♂A → Los rasgos son autosómicos (no ligados al sexo).
Ejemplo Teórico
Cruce
Producción de Resina en F1
Conclusión
♀Alta × ♂Baja
Alta
Si en el cruce recíproco es baja, sugiere
♀Baja × ♂Alta
Baja
herencia materna (citoplasma o genes ligados al X).
Aplicaciones
Mejoramiento de rasgos específicos:
Identificar si el alto THC se hereda vía materna.
Selección de parentales:
Si un rasgo deseable depende de la madre, usar esa línea como femenina en cruces comerciales.
Estudiar resistencia:
Determinar si la resistencia a estres está ligada al sexo.
Ventajas y Limitaciones
Ventajas
Limitaciones
– Revela mecanismos hereditarios ocultos.
– Requiere control estricto de polinización.
– Ayuda a optimizar esquemas de cruce.
– Difícil distinguir ADN citoplasmático vs. ligado al X.
Comparación con Otras Técnicas
Técnica
Cruce Recíproco
Autocruzamiento (S1)
Objetivo
Estudiar herencia ligada al sexo/citoplasma.
Fijar rasgos recesivos.
Diseño
Dos cruces invertidos.
Autopolinización forzada.
Conclusión
Los cruces recíprocos son esenciales para:
Breeders científicos que necesitan entender cómo se heredan rasgos complejos.
Optimizar programas de hibridación (ej: decidir qué parental usar como madre).
Investigación avanzada en genómica del cannabis.
Cruzamientos
Para iniciar un trabajo de crianza es vital conocer la genetica con la que queremos trabajar y como esta transmite las caracteristicas que la definen como una variedad, al analizar la descendencia en cruces F1 y F2 debemos fijarnos principalmente en la forma, el tamaño, el color de la semilla y necesitamos confirmar si estas transmiten su herencia a la descendencia segun la genética mendeliana clásica, epistasia o ligamento de genes, para confirmarlo utilisamos tecnicas de fitomejoramiento más la cromatografia de gases y aplicamos la fórmula del Chi Cuadrado, ya que es relevante para poder transmitir y fijar una característica y tambien de evitarlo en un cruce.
Cruce de prueba (o testcross)
Proceso Básico de un Testcross
Si aparece el rasgo recesivo (CBD alto) en ≈50% → Planta analizada era heterocigota (Aa).
Seleccionar la planta a analizar (ej: una planta con THC alto, pero genotipo desconocido: AA o Aa?).
Cruzarla con un parental recesivo homocigoto (ej: una planta con CBD alto y THC bajo: aa).
Analizar la descendencia:
Si el 100% muestra el rasgo dominante (THC alto) → Planta analizada era homocigota (AA).
Ejemplo Práctico
Genotipo Planta Desconocida
Cruce con Recesivo (aa)
Descendencia (F1)
Conclusión
AA (THC alto homocigoto)
× aa (CBD alto)
100% Aa (THC alto)
Parental era AA puro
Aa (THC alto heterocigoto)
× aa
50% Aa (THC alto), 50% aa (CBD alto)
Parental era Aa
Aplicaciones en el Breeding
Confirmar homocigosidad en parentales:
Verificar si una planta «THC alto» es AA (ideal para breeding) o Aa (portadora de CBD).
Mapear genes recesivos:
Estudiar herencia de terpenos raros (ej: limoneno recesivo).
Seleccionar plantas para retrocruces:
Identificar individuos homocigotos dominantes (AA) para fijar rasgos.
Ventajas vs. Otras Técnicas
Técnica
Testcross
Autocruzamiento
Objetivo
Revelar genotipo oculto
Fijar rasgos (endogamia)
Velocidad
1 generación
Múltiples generaciones
Precisión
Alta (usa parental conocido)
Menor (depende de S1/S2)
Limitaciones
Requiere un parental recesivo homocigoto (ej: línea pura de CBD).
No distingue entre heterocigotos y homocigotos si el rasgo es codominante.
Conclusión
El testcross es una herramienta esencial para breeders científicos que necesitan:
Validar la pureza genética de sus líneas.
Evitar sorpresas en cruces (ej: plantas que «secretamente» portan CBD).
Diseñar estrategias de cruce más precisas.
APTITUD COMBINATORIA
Un estudio de aptitud combinatoria (o combining ability analysis) es un método de mejoramiento genético que evalúa cómo interactúan distintas líneas parentales al cruzarse, identificando combinaciones que maximizan características deseables (THC, rendimiento, resistencia, etc.). Se utiliza para:
Seleccionar parentales superiores para programas de hibridación.
Predecir el desempeño de híbridos antes de realizar cruces masivos.
Optimizar recursos al enfocarse en las combinaciones genéticas más prometedoras.
Tipos de Aptitud Combinatoria
Tipo
Definición
Aplicación en Cannabis
Aptitud general (AGC)
Habilidad de un parental para producir buenos híbridos en promedio con múltiples parejas.
Identificar «buenos combinadores» universales (ej: una línea que siempre aporta alto THC).
Aptitud específica (AEC)
Habilidad de dos parentales específicos para complementarse genéticamente.
Encontrar parejas ideales (ej: Línea A + Línea B = terpenos únicos).
Metodología Básica
Selección de parentales:
Elegir líneas diversas (ej: 5 variedades puras con rasgos contrastantes).
Diseño de cruces:
Usar esquemas como cruzamiento dialélico (todos vs. todos) o parcial.
Evaluación de híbridos F1:
Medir parámetros clave:
Cannabinoides (THC, CBD).
Terpenos (perfil aromático).
Agronómicos (rendimiento, resistencia a plagas).
Análisis estadístico:
Modelos mixtos para separar efectos genéticos (AGC, AEC) y ambientales.
Ejemplo Práctico
Parentales:A (alto THC), B (alto rendimiento), C (resistente a hongos).
Cruces evaluados:A×B, A×C, B×C.
Resultados:
Cruce
THC (%)
Rendimiento (g/planta)
Resistencia a hongos
Conclusión
A×B
22.1
450
Media
Alta AEC para THC + rendimiento.
A×C
20.5
300
Alta
Buena AGC de A, pero baja AEC.
B×C
15.8
420
Alta
B y C combinan bien en rendimiento/resistencia.
Conclusión:
A es buen combinador general para THC.
A×B es la mejor combinación específica para maximizar THC y rendimiento.
Ventajas
Eficiencia: Evita cruces aleatorios sin potencial.
Precisión: Identifica interacciones genéticas no evidentes en parentales.
Versatilidad: Aplicable a cannabinoides, terpenos, morfología, etc.
Limitaciones
Requiere recursos: Necesita múltiples cruces y réplicas.
Depende del ambiente: Resultados pueden variar en distintas condiciones de cultivo.
Aplicaciones en Breeding
Desarrollo de híbridos comerciales:
Seleccionar parentales que combinen alto THC + terpenos deseables.
Mejora de resistencia:
Cruzar líneas con alta AEC para tolerancia a sequía o plagas.
Estabilización de rasgos:
Usar parentales con alta AGC como base para retrocruces.
Conclusión
Los estudios de aptitud combinatoria son clave para el breeding moderno de cannabis, permitiendo:
Selección científica de parentales (no solo por fenotipo).
Optimización de cruces para características complejas (ej: sabor + potencia).
Reducción de tiempo/costos al enfocarse en combinaciones genéticas probadas.
¡Híbridos! ¿Qué son y cómo crearlos?
La utilización de la heterosis a escala comercial se hace patente en las variedades híbridas o, sencillamente, híbridos.Las variedades híbridas son aquellas en las que las poblaciones F1, se usan para producir semilla comercial. Se pueden distinguir distintos tipos de híbridos: simples, dobles y triples.
Híbrido Simple o Híbrido F1
Un híbrido F1 (primera generación filial) es el resultado del cruce entre dos variedades puras (parentales homocigotos) con características genéticas distintas. En el cultivo de cannabis, los híbridos F1 son altamente valorados por su vigor híbrido (heterosis) y uniformidad fenotípica.
Características Clave de un Híbrido F1
Aspecto
Descripción
Parentales
Dos líneas puras (homocigotas) con rasgos complementarios (ej: THC alto + resistencia).
Genética
100% heterocigoto (AaBb) para los genes de interés.
Uniformidad
Plantas genéticamente idénticas entre sí en la generación F1.
Vigor híbrido
Mayor crecimiento, producción o resistencia que los parentales (ventaja evolutiva).
Estabilidad
Solo en F1; generaciones posteriores (F2, F3) muestran segregación genética.
Proceso de Creación
Selección de parentales:
Variedad A (ej: OG Kush estable) × Variedad B (ej: Haze estable).
Ambas deben ser líneas puras (homocigotas) para los rasgos deseados.
Polinización controlada:
Cruzar parental A ♀ × parental B ♂ (o viceversa).
Generación F1:
Todas las plantas expresarán un fenotipo uniforme y vigoroso.
Ventajas vs. Otras Generaciones
Híbrido F1
Generaciones Posteriores (F2, F3…)
– Máximo vigor híbrido.
– Vigor reducido (pérdida de heterosis).
– Fenotipos uniformes.
– Alta variabilidad fenotípica (segregación).
– Predecibilidad química.
– Requiere selección para estabilizar rasgos.
Ejemplo Práctico
Parental A:Afghan Kush (homocigoto para THC alto: AABB).
Parental B:Durban Poison (homocigoto para terpenos cítricos: aabb).
Híbrido F1:A a B b → THC alto + terpenos cítricos (uniforme en todas las plantas).
Aplicaciones en el Cultivo
Producción comercial:
Uniformidad en cosechas grandes.
Mejora genética:
Base para crear híbridos dobles o retrocruces.
Consistencia química:
Perfiles de cannabinoides/terpenos predecibles.
Limitaciones
Dependencia de parentales puros: Si los parentales no son estables, el F1 perderá uniformidad.
Imposibilidad de replicar: Las semillas F2 de un híbrido F1 no mantendrán sus características.
Conclusión
Los híbridos F1 son el estándar dorado para cultivos comerciales y breeding profesional, ofreciendo el equilibrio perfecto entre vigor, uniformidad y expresión genética controlada. Para preservar sus características, los breeders deben mantener las líneas parentales puras y producir nuevas semillas F1 cada vez.
Híbrido Doble
Un híbrido doble es el resultado de cruzar dos híbridos F1 diferentes entre sí, combinando así cuatro líneas genéticas distintas. Esta técnica es ampliamente utilizada en el breeding de cannabis para:
Crear perfiles químicos complejos con mayor diversidad genética
Maximizar el vigor híbrido (heterosis)
Combinar características deseables de cuatro parentales diferentes
Estructura del Cruce Doble
Paso 1: Cruzar Parental A × Parental B → F1 (AB)
Paso 2: Cruzar Parental C × Parental D → F1 (CD)
Paso 3: Cruzar F1 (AB) × F1 (CD) → Híbrido Doble (ABCD)
Características Clave
Aspecto
Descripción
Diversidad genética
Combina 4 pools genéticos distintos
Expresión fenotípica
Alta variabilidad en la descendencia
Vigor híbrido
Generalmente más pronunciado que en cruces simples
Estabilidad
Menor que en retrocruces, mayor que en híbridos triples
Ventajas Principales
Mayor potencial para expresar características únicas
Posibilidad de combinar múltiples rasgos deseables
Excelente base para posterior selección y estabilización
Aplicaciones Típicas
Desarrollo de nuevas variedades comerciales
Creación de plantas con perfiles cannabinoides y terpenos innovadores
Mejora de características agronómicas (rendimiento, resistencia)
Ejemplo Práctico
Parental A: Alta producción
Parental B: Alto THC
Parental C: Perfil terpenico único
Parental D: Resistencia a plagas
El híbrido doble resultante podría mostrar:
Alta producción (de A)
Potencia elevada (de B)
Aroma distintivo (de C)
Robustez (de D)
Este tipo de cruzamiento es particularmente útil cuando se buscan combinaciones innovadoras que no existen en las variedades disponibles.
Híbrido Triple
Un híbrido triple (o three-way cross) es el resultado de cruzar un híbrido F1 (primera generación de dos parentales puros) con un tercer parental distinto, combinando así tres líneas genéticas diferentes. Este método es común en el breeding de cannabis para:
Crear perfiles químicos innovadores que no existían en los parentales originales.
Aumentar la diversidad genética y potenciar el vigor híbrido (heterosis).
Mezclar características deseables de tres variedades (ej: THC alto, terpenos únicos, resistencia a plagas).
Estructura del Cruce Triple
Paso 1: Cruzar dos parentales (A × B) → Obtener F1.
Ejemplo: OG Kush (A) × Blue Dream (B) = F1 híbrido balanceado.
Paso 2: Cruzar el F1 con un tercer parental (C).
Ejemplo: F1 × Durban Poison (C) = Híbrido triple.
Características Clave
Aspecto
Descripción
Genética
Combina 3 pools genéticos distintos (A, B, C).
Estabilidad
Menor que un retrocruce (mayor variabilidad fenotípica).
Aplicación
Ideal para desarrollar nuevas variedades con perfiles únicos.
Ejemplo Práctico sin Datos Específicos
Parental A:Girl Scout Cookies (alto THC, perfil terroso-dulce).
Parental B:Haze (THC medio, efecto energizante).
Parental C:Northern Lights (alta producción de resina, relajante).
Híbrido Triple (F1 × C):
THC: Alto (herencia de GSC y Northern Lights).
Terpenos: Mezcla de notas terrosas (GSC), cítricas (Haze) y pine (Northern Lights).
Efecto: Balanceado (energía + relajación).
Ventajas vs. Retrocruce
Ventajas:
Mayor diversidad de cannabinoides y terpenos.
Posibilidad de descubrir fenotipos nuevos.
Desventajas:
Requiere más generaciones para estabilizar rasgos.
Menor previsibilidad en las proporciones químicas.
Conclusión: Un híbrido triple es una herramienta poderosa para breeders que buscan innovación y complejidad química, aunque requiere más tiempo y selección que un retrocruce.
Retrocruce (o backcross)
Un retrocruce (o backcross) es una técnica de mejora genética en la que un híbrido F1 se cruza nuevamente con uno de sus parentales originales (llamado parental recurrente). Su objetivo principal es fijar o reforzar características específicas del parental recurrente en la descendencia, como alto THC, perfil de terpenos o resistencia a enfermedades.
Pasos Básicos de un Retrocruce
Crear un híbrido F1:
Cruzar Parental A × Parental B → F1 (AaBb).
Retrocruzar el F1:
Cruzar F1 (AaBb) × Parental A (AABB) → Generación BC₁ (retrocruce primera generación).
Repetir (opcional):
Realizar múltiples retrocruces (BC₂, BC₃…) para aumentar la similitud genética con el parental recurrente.
Producción: Mejorada (herencia parcial de Northern Lights).
Ventajas vs. Híbridos Triples
Retrocruce
Híbrido Triple
– Mayor estabilidad genética.
– Mayor diversidad química.
– Rapidez para fijar rasgos.
– Potencial para nuevos fenotipos.
– Ideal para consolidar variedades.
– Requiere más selección y generaciones.
¿Cuándo Usar un Retrocruce?
Para estabilizar un rasgo dominante (ej: contenido de THC).
Introducir resistencia a estrés (sequía, plagas) en una variedad elite.
Corregir deficiencias en un híbrido (ej: mejorar estructura de cogollos).
Conclusión
El retrocruce es la herramienta clave para breeders que buscan uniformidad y control genético, mientras que los híbridos triples son mejores para explorar nueva diversidad
.
Selección Masal
Autocruzamiento: Técnicas para Forzar la Endogamia y Estudiar Caracteres Recesivos
Aunque el cannabis es dioico (plantas masculinas y femeninas separadas), existen métodos para simular la autofecundación y crear líneas endogámicas. Esto permite estudiar caracteres recesivos (ej: alto CBD, terpenos raros) y fijar rasgos deseables.
Cruce entre Hermanos (Full-Sibling Breeding)
Objetivo: Maximizar la similitud genética. Proceso:
Cruzar dos plantas hermanas (F1 del mismo cruce parental).
Seleccionar descendientes con los rasgos recesivos deseados.
Repetir por 3-5 generaciones hasta fijar caracteres.
Ejemplo:
Parentales: OG Kush (AABB) × Durban Poison (aabb).
F1: Todas AaBb.
Cruce F1 × F1: En F2 aparecerán plantas aaBB (alto CBD, si «b» es recesivo).
Estudio de Caracteres Recesivos
Ejemplo: Aislar Alto CBD
Parental con CBD recesivo: Supongamos que el alelo «b» produce CBD (y es recesivo frente a «B» de THC).
Cruzar dos portadores (Bb × Bb):
En F2, el 25% será bb (alto CBD).
Autocruzar plantas bb:
Todas las generaciones siguientes expresarán CBD alto.
Ventaja: Permite «destapar» genes recesivos ocultos en líneas comerciales (ej: plantas que secretamente portaban CBD).
Riesgos y Soluciones
Problema
Solución
Depresión endogámica (pérdida de vigor)
Introducir diversidad cada 3-4 generaciones.
Expresión de genes deletéreos
Selección rigurosa de plantas sanas.
Aplicaciones Prácticas
Crear líneas estables:
Ejemplo: Desarrollar una variedad con THC 20% + CBD 1% fijo.
Preservar genética rara:
Si solo tienes una planta excepcional, usar reversión sexual para conservar sus genes.
Estudiar herencia:
Mapear cómo se transmiten terpenos o resistencias a plagas.
Tabla Comparativa: Autofecundación vs. Cruce entre Hermanos
Técnica
Homocigosidad en 1 gen.
Vigor
Dificultad
Reversión sexual (S1)
≈75%
Bajo
Media (STS)
Cruce hermanos (F2)
≈50%
Medio
Baja
Conclusión
En cannabis, la «autofecundación» se simula mediante reversión sexual o cruces entre individuos clonados/hermanos. Esto permite:
Un cruce S1 (Selfing Generation 1) es una técnica de mejoramiento genético donde una planta femenina de cannabis se autopoliniza mediante la reversión sexual de una de sus ramas para producir polen con su misma genética. Esto genera una descendencia con alta homocigosidad, útil para estudiar rasgos recesivos o preservar genotipos élite.
Características Clave
Aspecto
Descripción
Parental
Una sola planta femenina (clon o híbrido F1).
Método
Reversión sexual (química o por estrés) para producir polen femenino.
Genética
≈75% de homocigosidad (similar a un cruce entre hermanos completos).
Polinizar las flores femeninas con su propio polen.
Resultado (S1):
70% de las plantas mantendrán el perfil de Gelato.
30% mostrarán variaciones (ej: THC más bajo, terpenos alterados).
Aplicaciones Comunes
Preservación de clones élite:
Crear semillas genéticamente similares a un clon famoso (ej: OG Kush S1).
Expresión de recesivos:
Descubrir CBD alto u otros rasgos ocultos en plantas dominantes.
Breeding rápido:
Evitar mantener bancos de clones madre.
Comparación con Otras Técnicas
Técnica
S1
F1
Retrocruce
Diversidad
Baja
Alta
Media
Homocigosidad
Alta (≈75%)
Baja (heterocigoto)
Variable (50-75%)
Uso
Preservación/estabilidad
Vigor híbrido
Fijar rasgos específicos
Conclusión: Los cruces S1 son una herramienta poderosa para:
Breeders que quieren conservar genética sin clonación.
Descubrir potencial oculto en plantas dominantes.
Producir semillas estables en menos generaciones.
Limitación clave: Requiere manejo cuidadoso para evitar pérdida de vigor.
¿Cómo Usar S1 Eficientemente?
Para rasgos mendelianos simples (ej: color): Espera proporciones 1:2:1 y selecciona homocigotos (AA o aa).
Para rasgos complejos (THC, resistencia): Evita S1 si hay alta depresión endogámica (usar retrocruces en su lugar).
Para evitar genes deletéreos: Prueba cruces de prueba (Aa × aa) antes de generar S1.
Si hay impronta genómica: Compara S1 con la planta madre para detectar pérdida de expresión.
Prueba de Chi-Cuadrado (χ²) en Genética
La prueba de chi-cuadrado es un método estadístico para determinar si las diferencias entre las frecuencias observadas y las esperadas en un experimento genético son significativas o se deben al azar.
Es clave para validar hipótesis como:
¿Siguen los datos una proporción mendeliana (ej.: 9:3:3:1)?
¿Hay epistasia o ligamiento génico?
Fórmula del Chi-Cuadrado
χ² = ∑( O – E ) ² /E
O: Valor observado.
E: Valor esperado (según la hipótesis)
∑: Sumatoria sobre todas las categorías.
Apliquemos lo aprendido en un ejercicio teórico-práctico, comenzando por analizar la concentración de cannabinoides y terpenos del cruce F1 entre una sativa pura México Oaxaca x una índica pura Hindú Kush.
Al analizar el híbrido F1 Oaxaca Kush, este manifiesta principalmente el fenotipo de México Oaxaca claramente en heterocis (vigor hibrido) pero no mantiene las mismas concentraciones de THC y CBD de México Oaxaca, sino una característica intermedia entre los dos parentales.
Tabla Comparativa: Parentales Mexico Oaxaca x Hindu Kush vs. Híbrido F1 Oaxaca Kush
Grados de libertad (gl): N° de compuestos – 1 = 13 – 1 = 12
Valor crítico (χ² tabla, gl=12, α=0.05): 21.03
Conclusión:
2.12 < 21.03 → No hay diferencias significativas entre el F1 y el modelo 50/50.
Análisis Biológico Destacado:
THC: Ajuste casi perfecto al modelo (χ²=0.026)
Terpenos ausentes en F1 (humuleno, nerolidol): χ2 alto (0.645 y 0.50) indica que estos compuestos no siguen el modelo 50/50, posiblemente por silenciamiento génico.
CBD (χ2=0.453): La mayor discrepancia (0.07%) está más cerca del parental México Oaxaca (0.04%) que del valor esperado (0.585%) Estadísticamente, el CBD no difiere significativamente del modelo 50/50 (χ²=0.453 < 3.84).
El CBD es el único que muestra una desviación notable (7 veces menor que lo esperado), pero el tamaño de la muestra o la variabilidad natural podrían explicar el χ² no significativo.
Biológicamente, es el compuesto con la mayor discrepancia numérica, lo que invita a investigar mecanismos no aditivos (dominancia parcial, regulación compleja, etc.).
Hipótesis
Explicación
Compatibilidad con χ²=0.453
Dominancia parcial
El alelo de bajo CBD (México Oaxaca) «domina» parcialmente sobre el de alto CBD.
El F1 tiende hacia México Oaxaca, pero no es suficiente para ser significativo.
Regulación compleja
Factores adicionales (ej. enzimas, epigenética) afectan la expresión de CBD.
El χ² bajo sugiere que el modelo 50/50 no es rechazado, pero hay matices.
Recomendaciones para Análisis Futuros: Para confirmar, necesitarías:
Segregación fenotípica
Generar una población F2 para verificar la presencia (ej., 3:1 o 9:7)
Análisis genético (ej., secuenciar CBDA sintasa en parentales y F1)
Tabla Resumen: Técnicas y Resultados Esperados
Técnica
Aplicación
Resultado Clave
Cruzamiento F2
Segregación fenotípica
Proporciones 9:7 (epistasis) o 1:2:1 (dominancia)
Backcross
Confirmar alelos supresores
Distribución 50:50 o 25:75
Genotipado (PCR/Secuenciación)
Identificar mutaciones
Alelos no funcionales en CBDA sintasa
RT-qPCR
Niveles de expresión génica
Silenciamiento de CBDA sintasa en F1
QTLs
Mapear regiones genómicas
Genes asociados a producción de CBD
Conclusión Final
Combinando estas técnicas podrás:
Confirmar si el CBD sigue un modelo mendeliano (dominancia/epistasis).
Identificar genes responsables de la variación.
Optimizar cruzas futuras para obtener fenotipos deseados.
Análisis Completo con Retrocruce (Backcross) para Confirmar Alelos Supresores
Tabla Comparativa: Dominancia Incompleta vs. Epistasis con Retrocruce
(Basado en el cruce México Oaxaca × Hindú Kush → F1 Oaxaca Kush)
Mecanismo
Genotipos Parentales
Fenotipo F1 (0.07% CBD)
Proporción F2
Retrocruce F1×México (aaEE)
Retrocruce F1×Hindú (AAee)
Evidencia en tus Datos
Dominancia Completa
AA (alto) × aa (bajo)
Alto (≠0.07%)
3 alto : 1 bajo
100% alto
100% alto
Descartado (F1 no es alto)
Dominancia Incompleta
AA (1.13%) × aa (0.04%)
Intermedio (0.585%)
1:2:1
50% intermedio : 50% bajo
50% alto : 50% intermedio
Poco probable (F1=0.07% ≠ 0.585%)
Epistasis Recesiva
AAee × aaEE
Bajo (supresión por ee)
9 alto : 7 bajo
50% alto : 50% bajo
100% bajo
Más probable (F1 cercano a 0.04%)
Herencia Aditiva
AA × aa
Promedio (0.585%)
1:2:1
50% intermedio : 50% bajo
50% intermedio : 50% alto
Descartado (F1≠promedio)
Explicación Resumida del Retrocruce:
Objetivo: Confirmar si el bajo CBD en el F1 se debe a un alelo supresor recesivo (ee).
Protocolo:
Cruza 1 (Retrocruce x Mexico Oaxaca): F1 Oaxaca Kush (AaEe) × México Oaxaca (aaEE)
Esperado en Epistasis: 50% alto CBD (AaEE), 50% bajo CBD (aaEe).
Cruza 2 (Retrocruce x Hindu Kush): F1 Oaxaca Kush (AaEe) × Hindú Kush (AAee)
Esperado en Epistasis: 100% bajo CBD (A-ee).
Interpretación:
Si los resultados coinciden con lo esperado → Confirma epistasis.
Si aparecen fenotipos intermedios → Sugiere dominancia incompleta.
Pasos Prácticos:
Realiza ambos retrocruces (F1 con cada parental).
Analiza CBD en 30-50 plantas por cruce.
Compara proporciones:
Si en F1 × México Oaxaca ves 1:1 alto/bajo y en F1 × Hindú Kush 100% bajo → Epistasis confirmada.
Ejemplo de Resultados Esperados:
Cruza
Progenie (CBD)
Conclusión
F1 × México Oaxaca
15 alto : 15 bajo
Epistasis (1:1 esperado)
F1 × Hindú Kush
30 bajo
Supresor (ee) activo
Conclusión Final:
El retrocruces es la prueba definitiva para discriminar entre estos mecanismos.
El bajo CBD en el F1 (0.07%) sugiere fuertemente epistasis, pero los retrocruces lo confirmarán.
Proporciones Alélicas y Genotípicas para Desarrollar Variedades Altas en CBD
(Cruce: México Oaxaca [aaEE] × Hindú Kush [AAee])
Generación
Proporción Genotípica
Proporción Fenotípica (CBD)
Selección Óptima
Uso en Fitomejoramiento
F1
100% AaEe
100% bajo (0.07%)
–
Base para generar F2
F2
9 A-E- : 3 A-ee : 3 aaE- : 1 aaee
9 alto : 7 bajo
AAEE (alto CBD sin supresor)
Línea pura estable
BC1 (F1 × México Oaxaca)
1 AaEE : 1 aaEe
50% alto : 50% bajo
AaEE (alto CBD)
Introgresión de terpenos
BC2 (F1 × Hindú Kush)
1 AAee : 1 Aae e
100% bajo (supresión)
Evitar
Silenciar THC en otros híbridos
F3 (de AAEE)
100% AAEE
100% alto (1.13%)
Ideal para cultivo comercial
Variedad estable CBD
Claves para Seleccionar la Mejor Progenie
En F2:
Buscar plantas AAEE (1/16 de la población). Usar marcadores moleculares para identificar.
Ejemplo: En 200 plantas F2, esperar ~12 plantas AAEE.
En Retrocruces:
F1 × México Oaxaca: Seleccionar AaEE (alto CBD) para mantener diversidad genética.
Autopolinización:
Plantas AAEE → Generar línea 100% estable (F3-F4).
Ejemplo de Proporciones en 200 Plantas F2
Genotipo
Proporción Teórica
N° Esperado de Plantas
Fenotipo CBD
AAEE
1/16
12-13
Alto (1.13%)
AaEE
2/16
25
Alto (1.13%)
aaEE
1/16
12-13
Bajo (0.04%)
AAee
2/16
25
Alto (1.13%)*
Aaee
4/16
50
Bajo (0.07%)
aaee
1/16
12-13
Bajo (0.04%)
Nota:AAee también es alto CBD, pero porta el supresor (útil para otros cruces).
Recomendaciones para Maximizar el Éxito
Marcadores Moleculares: Usar SNP en CBDA-sintasa (A/a) y SSR en gen E (E/e).
Selección Temprana: Analizar plántulas F2 con PCR para ahorrar tiempo y recursos.
Validación Química: Confirmar fenotipos con HPLC en etapa de floración.
Aprovechamiento de Epistasis Recesiva en Fitomejoramiento de Cannabis
Objetivo: Desarrollar variedades con CBD alto (>1%) y THC suprimido (<0.1%) mediante el control del alelo supresor ee identificado en el parental Hindú Kush.
Hallazgos Clave:
Mecanismo Genético:
El Hindú Kush (AAee) porta el alelo supresor ee que enmascara la expresión de CBD en heterocigosis (AaEe → F1 = 0.07% CBD).
Aplicaciones Prácticas:
Creación de variedades estables AAEE (CBD alto sin supresión).
Desarrollo de híbridos con THC suprimido (AAee × aaEE → AaEe).
Tabla Comparativa: Estrategias de Mejoramiento
Parámetro
Variedad CBD Pura (AAEE)
Supresor Portador (AAee)
Híbrido CBD/THC (AaEe)
Genotipo Objetivo
AAEE
AAee
AaEe
CBD Esperado
1.1-1.3% (como Hindú Kush)
1.1-1.3%
0.07% (supresión por ee)
THC Controlado
<0.1% (selección natural)
<0.1% (en combinación con aaEE)
0% (supresión total)
Método de Obtención
Selección en F2 + autopolinización
Cruzar Hindú Kush × variedades élite
AAee × aaEE
Ventaja Principal
Estabilidad generacional
Herramienta para silenciar THC
Cultivos legales (THC=0%)
Tiempo Estimado
2-3 años
1-2 años
1 año
Protocolo Simplificado
Generar F2: Autopolinizar F1 (AaEe) → 200 plantas.
Ensayos de campo para rendimiento y perfil de terpenos.
Beneficios Clave
Reducción de THC: Uso de ee para cumplir regulaciones (<0.3% THC). Innovación: Combinar epistasis con otros rasgos (ej. alto mirceno). Eficiencia: MAS acelera el proceso 3x vs. selección tradicional.
Conclusión Final
Datos apuntan a epistasis recesiva
Para desarrollar variedades altas en CBD utilizando la epistasis recesiva, «variedades élite» se refiere a plantas que cumplen con características superiores y específicas que las hacen ideales para programas de mejoramiento. Aquí te detallo qué las hace especiales y cómo usarlas estratégicamente:
Características de una Variedad Élite:
Atributo
Descripción
Ejemplo Aplicado a tu Proyecto
Alto Rendimiento
Producción abundante de flores/biomasa
Variedad que produce +500 g/m² en condiciones controladas
Perfil de Cannabinoides Estable
CBD >15% y THC <0.3% (cumplimiento legal)
Plantas con genotipo AAEE de tu F2
Resistencia
Tolerancia a plagas (ej. ácaros) o estrés abiótico (sequía)
Parental resistente a oídio para cruzar con Hindú Kush
Calidad de Terpenos
Perfil aromático deseable (ej. alto mirceno para efectos sedantes)
Variedad con >2% mirceno en tricomas
Uniformidad Genética
Línea homocigótica estable (ej. AAEE o AAee)
Plantas F3-F4 derivadas de tu selección F2
Cómo Usar Variedades Élite
1. Introgresión del Alelo Supresor (ee) a Variedades Élite Existentes
Objetivo: Transferir el mecanismo de supresión de THC a una variedad ya optimizada.
Protocolo:
Cruzar Hindú Kush (AAee) × Variedad Élite (aaEE).
En F1 (AaEe), seleccionar plantas con alto CBD y otros rasgos élite.
Autopolinizar y genotipar F2 para obtener AAee con todos los rasgos deseables.
2. Desarrollo de una Nueva Variedad Élite
Pasos:
Combinar AAEE (alto CBD de tu F2) × Variedad Élite con alto mirceno.
Seleccionar en F2 plantas con:
Genotipo AAEE (CBD alto estable).
Perfil de terpenos de la élite (ej. mirceno >1.5%).
3. Ejemplo Práctico
Parental 1
Parental 2
Progenie Objetivo
Ventaja
Hindú Kush (AAee)
Élite alta en mirceno (aaEE)
AaEe (supresión de THC)
Combina CBD alto + terpenos premium
Tabla: Comparación de Estrategias con Variedades Élite
Estrategia
Cruza Involucrada
Resultado Esperado
Tiempo Estimado
Introgresión de ee
Hindú Kush × Élite comercial
Nueva élite con THC suprimido
2-3 años
Creación de Nueva Élite
AAEE (tu F2) × Élite en terpenos
Variedad CBD+terpenos optimizados
3-4 años
Mejoramiento Piramidal
Combinar múltiples élites
Supervariedad (CBD+rendimiento+resistencia)
4-5 años
Beneficios Clave
Eficiencia: Acelera el mejoramiento al partir de genética ya optimizada. Calidad Garantizada: Las élites aportan rasgos validados (ej. densidad de tricomas, velocidad de floración). Adaptabilidad: Puedes elegir élites adaptadas a tu clima local.
Ejemplo de variedades élite populares para cruzar con Hindú Kush:
ACDC (alto CBD, bajo THC).
Cannatonic (perfil balanceado CBD/THC).
Elektra (alto mirceno y CBD).
Recomendaciones Finales
Verifica la estabilidad genética de la élite antes de cruzar (usar controles SSR).
Prioriza élites con testeo químico (HPLC previo para CBD/THC/terpenos).
Documenta genealogías para rastrear el origen del alelo ee.
El término segregar hace referencia a apartar, separar a alguien de algo o una cosa de otra. Genéticamente segregación es la separación de cromosomas homólogos (y genes) de los diferentes progenitores en la meiosis. La segregación se hace evidente en la F2 o en generaciones posteriores de una cruza.
Cuando los miembros de la generación F1 se entrecruzaron, Mendel recobro muchos descendientes con semillas amarillas, y algunos de semillas verdes. Luego del análisis estadístico de la generación F2, Mendel determinó que la relación entre plantas con semillas amarillas/verdes era 3:1. Las plantas con semillas verdes no aparecían en la primera generación F1, y se encontraban en la segunda F2 y sucesivas generaciones.
Mendel concluyó que el carácter estudiado estaba gobernado por factores discretos (separables) y que el rasgo del carácter que aparece en la F1 es el dominante. Los factores se heredaban a pares, teniendo cada generación un par de los mismos. Actualmente nos referimos a esos factores como alelos. El hecho de que los caracteres se hereden de a pares permiten explicar el fenómeno observado del «salto» de una generación.
El cruzamiento en las plantas se realiza mediante la reproducción sexual de dos individuos diferentes, dando como resultado una descendencia que hereda parte del material genético de cada progenitor. Los organismos parientes deben ser genéticamente compatibles y pueden ser de variedades diferentes o de especies muy cercanas. El cruzamiento originalmente se da bajo polinización cruzada natural entre plantas cuya constitución genética es diferente.
El cruzamiento en las plantas, como en los animales, se da como una forma de evitar la endogamia y aumentar al máximo la diversidad genética y las oportunidades asociadas para la supervivencia.
El cruzamiento entre variedades o entre especies relativamente distantes es un método muy utilizado en el mejoramiento de la productividad de las plantas. Para ello fue necesario conocer la forma como se heredaban las características de los progenitores e identificar los caracteres deseables.
El cruzamiento tiene entonces como objetivos: combinar alelos, introducir alelos, seleccionar alelos en la obtención de materiales o líneas mejoradas.
Mendel fue el primero que estudió la herencia, iniciando con la forma de la semilla de la arveja. Él cruzó una raza pura de plantas de semillas lisas con una raza pura de otra que siempre producía semillas rugosas (60 fertilizaciones en 15 plantas). Todas las semillas resultantes resultaron lisas. A este fenómeno se le llamó Cruzamiento de un solo carácter o monohibridación.
Al año siguiente, Mendel plantó esas semillas y permitió que las mismas se auto fecundasen. Recogió 7324 semillas en total: 5474 lisas y 1850 rugosas. Para sistematizar el registro de datos, las generaciones fueron nombradas y numeradas. La generación parental se denomina como P. Los descendientes de la generación P son la generación F1 (la primera filial). La autofecundación de la generación de F1 produce la generación F2 (la segunda filial).
P1. Lisa X Rugosa
F1 Todas lisas
F2. 5474 lisas y 1850 rugosas
Lo mismo sucedió con cada par de caracteres elegidos: cuando cepas puras de plantas con semillas amarillas se cruzaron con razas puras de plantas con semillas verdes, todos los descendientes fueron plantas con semillas amarillas. Los padres del entrecruzamiento son la generación P1, y los descendientes representan la generación F1.
La aptitud combinatoria (AC) es la capacidad de un genotipo (línea consanguínea, individuo o clon) o de una población, de dar descendencia híbrida caracterizada por la alta expresión de un carácter. En otras palabras, la AC, es el método utilizado para escoger los mejores progenitores
La AC. mide la capacidad para producir heterosis en ciertos caracteres y se cuantifica, evaluando el comportamiento del genotipo o población en todos los cruzamientos posibles. Si el genotipo produce buenos híbridos en todos los cruzamientos en los que participa, se dice que tiene buena aptitud combinatoria general (ACG). Si sólo es con determinados genotipos, se dice que tiene buena aptitud combinatoria específica (ACE.). La aptitud combinatoria es hereditaria.
En un programa de mejoramiento cuya finalidad sea la obtención de híbridos, la ACE es más importante que la aptitud combinatoria general, debido a que se aprovechan los efectos no aditivos como la dominancia y la Epístasis Cruzamientos y Segregación
Manual para la producción de Semillas feminizadas con tiosulfato de plata. STS
Se sugiere trabajar la feminización con plantas obtenidas desde semilla regular y hacer la selección de una planta mayormente pistilifera (hembra) que no muestre rasgos de intersexualidad (hermafroditismo)
Se deben considerar dos cámaras de cultivo, una para el proceso vegetativo y una para la floración, en la cámara de crecimiento a: 18/6 se mantendrán las plantas madres.
El ideal es que sean dos variedades de distinta condición genética por ej: Sativa/Indica (Brasil x Sur de la India) es el cruce original de White Widow, también puede ser entre híbridos por citar algunos: Jack47 (Jack Herer x AK47); Jackwidow (Jack Herer x White widow)
Por la condición del cannabis de pertenecer a la familia Alogama-Dioica le favorece la polinización cruzada. Una ves realizado el trabajo de selección de los parentales y para no perder el avance el ideal es trabajar la reversión del sexo con esquejes.
Ya que las plantas no reaccionan de manera automática a una concentración de sts estándar, se debe hacer una reversión de prueba para cada esqueje y para esto es muy importante numerar los esquejes con la disolución aplicada
Se debe realizar todo el proceso en un cuarto oscuro ya que el nitrato de plata es fotosensible, se debe iluminar únicamente con una ampolleta bombilla o foco LED, que de luz de color rojo: NO se debe utilizar NINGUN INSTRUMENTO METALICO.
Se deben utilizar medidas de prevención al manipular el producto. El nitrato de plata produce quemaduras en la piel en forma de manchas oscuras, no duele pero las manchas permanecen durante varias semanas, aunque nunca es bueno que nuestra piel tenga contacto con productos químicos, ni siquiera con los productos de limpieza del hogar.
Las plantas tratadas y los restos de productos no aplicados, deben considerarse como productos contaminantes. No existe información sobre el consumo de las plantas tratadas; deben ser desechadas.
Solución 1 Nitrato de Plata 10 ml. Solución 2 tiosulfato de sodio 40 ml. Estas dos soluciones se deben guardar por separado en lugar oscuro y a baja temperatura hasta el momento de su uso. También se necesitara 200ml de agua destilada. Para completar 250ml de sts base.
Preparación: Agregar la solución 1 nitrato de plata (10 ml) a los 200 ml de agua destilada de manera muy lenta sin precipitar, después se agrega la solución 2 tiosulfato de sodio (40 ml) también muy lentamente sin precipitar mejor si cada mezcla se hace gota a gota, obtendremos en total 250ml de STS BASE.
Una vez mezcladas las soluciones 1 y 2, solo tiene estabilidad a corto plazo pero de todas maneras servirá para una segunda aplicación, se debe mantener refrigerado pero después de la segunda aplicación no es conveniente guardarlo.
Los 250ml de STS BASE se deben diluir para ser utilizado se sugiere hacerlo en 500ml de agua destilada (1:2) en la reversion de prueba puedes aplicar distintas concentraciones
Antes de aplicar el sts por el anverso y reverso de las hojas se debe tapar el sustrato con un plástico para que no llegue a las raíces, una ves aplicado el sts se pasa a la cámara de floración con el foco y ventiladores apagados hasta el día siguiente, hasta cuando se prenda el foco a un fotoperiodo de 12/12.
Hay quienes aplican nuevamente despues 7,10,15 ó 20 días una aplicación también es suficiente eso dependerá de cada variedad y se resolverá en la reversión de prueba. Recuerda que después de aplicar el sts la planta debe permanecer a oscuras y con los ventiladores apagados hasta que el producto se ha fijado y secado (una noche es suficiente).
entre 20 y 30 días después de la aplicación comenzaran a aparecer las primeras flores macho (poliniferas) en cuanto notes que están apareciendo introduces los clones receptores que serán fecundados con el polen revertido.
este punto es muy importante ya que si introduces los esquejes de los parentales al mismo tiempo a la cámara de floración puede que en los esquejes receptores su proceso de floración este muy avanzado y las semillas no alcancen a madurar completamente este proceso también dependerá de la rapidez de la floraciónde cada variedad que es un punto importante a considerar.
Nota: Se deben utilizar solo los elementos que van incluidos en el kit sts, ya que si se usa otra botella u otros utensilios que no estén lo suficientemente limpios, puede estropear la mezcla y por ende su efectividad.
Se consideran plantas autógamas a aquellas que utilizan la autofecundación como mecanismo reproductivo.
Se considera como alógamas a aquellas plantas que no se auto fecundan, sino que, por el contrario, poseen mecanismos de fecundación cruzada.
La alogamia es un sistema que garantiza la variabilidad genética y por tanto las nuevas combinaciones alélicas dentro de una especie. En la evolución de plantas fueron apareciendo mecanismos de reproducción que favorecían la alogamia y que excluían total o parcialmente la autogamia. Las ventajas de la alogamia radican en la producción de nuevas combinaciones genéticas en la población, que aseguran la variabilidad de la especie y, en consecuencia, la posibilidad de sobrevivir a los cambios de medio ambiente. Por eso las Angiospermas desarrollaron numerosas adaptaciones florales para favorecer la alogamia, como por ejemplo la separación espacial y temporal de los sexos y otras variaciones como la presentación secundaria de polen.
Según el tipo de flor que posean, las plantas alógamas se clasifican en tres grupos:
Plantas con flores hermafroditas: Son flores completas que poseen los dos sexos. Ejemplo de ellas son: Cebolla, el centeno y el maracuyá.
Plantas monoicas: Tienen flores unisexuales masculinas y femeninas en la misma planta, como el melón, el mijo, el pepino y el maíz.
Plantas dioicas: Plantas con flores masculinas y plantas con flores femeninas, como araucaria y kiwi.
Para una especie alógama o de fecundación cruzada, el proceso de autofecundación o cruzamientos con individuos estrechamente emparentados, lleva a grandes problemas con consecuencias drásticas para algunos alelos pues durante el proceso de autofecundación se manifiestan alelos letales que no se manifestaban en el estado heterocigótico.
En las poblaciones de plantas alógamas, es frecuente la presencia de factores desfavorables que se mantienen en heterocigosis, tales como genes de esterilidad floral en centeno, letales por deficiencias clorofílicas en maíces y otros. En la mayoría de los casos estos genes se mantienen porque la selección natural favorece a los heterocigotos.
Los genes considerados letales hacen que el individuo no llegue a desarrollarse, muriendo en estado de embrión. Sin embargo, a veces la letalidad no es completa y se considera más bien como subletalidad, caracterizada por una disminución de la sobre vivencia de los individuos homocigóticos para un determinado gen o por la manifestación a una determinada edad de los efectos del gen.
Las plantas alógamas han desarrollado mecanismos que les permiten mantener o incentivar la alogamia, tales como la dicogamia y la presencia de barreras mecánicas.
Plantas dioicas
Las especies dioicas son plantas bisexuales. Cada especie presenta individuos con flores masculinas e individuos con flores femeninas, lo que determina la alogamia obligada. Esto significa que las dos estructuras reproductoras se hallan en plantas diferentes (plantas estaminadas y plantas pistiladas).
Muchas plantas dioicas presentan flores relativamente pequeñas, blancas, amarillentas o verdosas, de morfología no especializada, que atraen una variedad de insectos pequeños.
La dioecia o diferenciación sexual es claramente un mecanismo de fecundación cruzada que impide la autofecundación, pero no impide el apareamiento entre hermanos o formas más estrechas de consanguinidad.
A menudo la dioecia está asociada con plantas de gran tamaño y polinización abiótica. Es rara en plantas con flores grandes, especializadas, con morfología compleja. Entre las plantas cultivadas las especies dioicas más importantes son: la palmera africana, cáñamo, lúpulo, espinaca, papayo, la marihuana, álamo y el espárrago.
El fenotipo es la manifestación visible del genotipo en un determinado ambiente, por lo tanto, está determinado fundamentalmente por el genotipo o por la identidad de los alelos, los cuales, individualmente, cargan una o más posiciones en los cromosomas. Algunos fenotipos están determinados por los múltiples genes y además influenciados por factores del medio. De esta manera, la identidad de uno o de unos pocos alelos conocidos, no siempre permite una predicción del fenotipo. En este sentido, la interacción entre el genotipo y el fenotipo ha sido descrita usando siguiente ecuación: Fenotipo = Genotipo + Ambiente
La constitución genotípica de cada planta depende de cierta manera de la forma en que ésta se reproduce, por lo tanto, el sistema reproductivo de cada planta estará relacionado con el método específico que debe utilizarse para poder mejorarla.
Las plantas que se reproducen sexualmente mediante polinización pueden hacerlo de varías formas, ya sea fertilizándose a sí mismas o fertilizándose unas a otras entre individuos de la misma especie. Así, será importante determinar qué tipo de fertilización se da en cada especie a fin de poder manipular prácticas como las de polinización artificial antes de comenzar programas de mejora genética.